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原代細胞分離的基本方法有哪些?

時間:2019/1/17閱讀:2338
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  人或動物體內(或胚胎)的組織,將其剪碎至1mm3的組織塊,再采用如下方法進行原代細胞
 
  分離培養(yǎng):
 
一、懸浮細胞的分離方法
 
  1、將血液、羊水、胸水或腹水等懸液直接轉至離心管中,1000rpm/分鐘離心5分鐘。
 
  2、去掉上清,離心沉淀用無鈣、鎂的PBS清洗后1000rpm/分鐘離心5分鐘。此步重復兩次。
 
  3、用培養(yǎng)基重懸,調整適當細胞濃度后分瓶培養(yǎng)。
 
  4、如選用懸液中某種細胞,可采用離心后的細胞分層液收獲目的細胞。
 
  二、實體組織材料的分離方法
 
  (一)機械分散法
 
  1、纖維成分很少的腦組織,部分胚胎組織,用剪刀剪碎至1mm3的組織塊。
 
  2、用PBS清洗兩次后
 
 ?、儆梦艽荡?,分散組織細胞。
 
  ②或將已充分剪碎分散的組織放在注射器內(用九號針),使細胞通過針頭壓出。
 
  ③或在不銹鋼紗網內用鈍物(注射器鈍端)壓擠使細胞從網孔中壓擠出。
 
  3、收集細胞轉入離心管中,1000rpm/分鐘離心5分鐘。
 
  4、去上清,加入含血清的培養(yǎng)基,重懸后移至培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)。
 
  (二)消化分離法
 
  1、酶消化分離法(過夜冷消化法)
 
  ①細胞間質較少的軟組織,如肝、腎、甲狀腺、羊膜、胚胎組織、上皮組織等,用Hanks液清洗組織三次,剪成碎塊大小為4毫米左右。
 
 ?、谠儆肏anks液洗2-3次以除去血球和脂肪組織。
 
  ③加入0.25%的*,搖勻后放4℃過夜。
 
 ?、艽稳赵儆肏anks液洗滌,棄去上清,共洗2-3次。
 
 ?、菁尤肷倭亢宓呐囵B(yǎng)基吹打分散,細胞計數(shù),按適當?shù)臐舛确制颗囵B(yǎng)。
 
  2、非酶消化法(EDTA消化法)
 
 ?、侔呀M織塊剪碎,呈1mm3大小的組織塊。
 
 ?、趯⑺榻M織塊在平皿中用無鈣鎂PBS洗2-3次。
 
 ?、奂尤胂?*或膠原酶或EDTA)于37℃水浴中作用適當時間(中間可輕搖1~2次),若組織塊膨松呈絮狀可終止,若變化不大可更換一次消化液,繼續(xù)消化直至膨松絮狀為止。
 
 ?、軛壢ド锨?,加入含有鈣、鎂離子的培養(yǎng)基中止消化反應,并洗滌2-3次后,加入*培養(yǎng)基。
 
  ⑤用吸管吹打,使細胞充分散開后用紗網過濾后分瓶培養(yǎng)。
 
  (三)原代細胞培養(yǎng)
 
  原代培養(yǎng)是直接從生物體獲取細胞進行培養(yǎng)。由于細胞剛剛從活體組織分離出來,故更接近于生物體內的生活狀態(tài)。這一方法可為研究生物體細胞的生長、代謝、繁殖提供有力的手段,同時也為以后傳代培養(yǎng)創(chuàng)造條件。利用此方法還可直接服務于臨床實踐。例如,用從手術中切除的腫瘤細胞進行原代培養(yǎng),然后用該培養(yǎng)細胞進行抗癌藥物的篩選,根據(jù)腫瘤細胞對加入的*藥物的敏感性來幫助選擇有效的*方案,有可能起到增強療效、降低副作用的作用。
 
  (四)原代細胞的傳代、保存
 
  (1)傳代:依椐細胞的生長狀態(tài),生長的細胞1:2或1:3進行傳代。
 
  (2)保存:DMSO+培養(yǎng)液+血清
 
  按下列順序降溫:室溫→4℃(20分鐘)→冰箱冷凍室(30分鐘)→超低溫冰箱(-80℃ 過夜)→液氮。
 
  (五)原代細胞的復蘇
 
  (1)取出細胞,迅速放入37℃溫水中快速解凍。
 
  (2)吸出細胞懸液,并加10倍以上培養(yǎng)液。
 
  (3)用培養(yǎng)液適當稀釋后接種培養(yǎng)瓶,放入37℃ CO2 培養(yǎng)箱靜置培養(yǎng)。

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