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用途：

      FluorPen FP 110葉綠素熒光儀可在實驗室、溫室或野外快速測量植物受生物或非生物脅迫后的光合活性狀態(tài)，具有攜帶方便、準確度高、性價比高等特點；測量參數(shù)包括Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、NPQ等，還可以進行OJIP分析和光響應曲線動力學研究。

       PAR-FluorPen FP 110是FP 110的升級版，可以直接測量400-700nm范圍內(nèi)光合有效輻射PAR（umol/m2/s），光量子傳感器對400-700nm波段的光具有均勻的響應，實時讀數(shù)為20個測量值的平均值。

      測量的數(shù)據(jù)存儲于儀器內(nèi)部，通過藍牙或USB與計算機連接，采用專業(yè)的軟件進行數(shù)據(jù)傳輸和分析，數(shù)據(jù)可視化。

測量原理：利用調(diào)制-飽和-脈沖熒光技術，測量并計算葉綠素熒光參數(shù)。

應用領域：       

適用于光合作用研究和教學，植物及分子生物學研究，農(nóng)業(yè)、林業(yè)，生物技術領域等。研究內(nèi)容涉及光合活性、脅迫響應、農(nóng)藥藥效測試、突變體篩選等。       

植物光合特性和代謝篩選       

生物和非生物脅迫的檢測       

植物抗脅迫能力或者易感性研究       

代謝紊亂研究       

生長長勢與產(chǎn)量評估       

植物——微生物交互作用研究       

植物——原生動物交互作用研究

 軟件：       

 FluorPen 1.1版本，支持windows 7及更高版本       

實時及遠程控制功能       

藍牙和USB通訊       

可視化數(shù)據(jù)，可轉換成Excel格式       

GPS地圖

參數(shù)介紹       

Ft——非光化光下的實時熒光，暗適應后Ft = Fo；       

QY——PSII量子產(chǎn)量。暗適應QY = Fv/Fm，光適應QY = Fv’/Fm’;Fv/Fm是使用頻繁的熒光參數(shù)。       

OJIP——葉綠素熒光快速瞬態(tài)分析是一種簡單、非侵入性測量葉綠體功能的方法。OJIP分析可以靈敏、準確的分析光化學系統(tǒng)的功能和活性。       

NPQ——儀器提供2組測量程序，每組程序均有持續(xù)照光和黑暗恢復階段。

NPQ測量是一種典型的量化暗適應后樣品光化學和非光化學淬滅的工具。       

LC——儀器內(nèi)置3組光曲線測量程序，每組程序的脈沖數(shù)量、持續(xù)時間以及光強均不同。LC光曲線程序?qū)B續(xù)光照下不同光強照射的樣品光合作用進行連續(xù)測量，將光合作用速率與光強聯(lián)系起來。       

PAR——光合有效輻射（PAR-FluorPen FP 110版本具有此功能） 

技術規(guī)格：

案例介紹：

案例1：正常澆水與干旱脅迫下接種固氮螺菌屬及叢枝菌對水稻光合活性(Fv/Fm)的影響

WW：正常澆水   

D：干旱脅迫

M：Glomus intraradices

A：Azospirillum brasilense

無論是正常澆水會干旱脅迫，接種兩種菌后水稻的光合效率均顯著增加，而兩種菌都接種的樣品，光合效率增加較多，水分條件對水稻的光合效率沒有顯著影響。

案列2：鹽脅迫對接種叢枝菌的萵苣光合活性(Fv/Fm)的影響

無論接種叢枝菌與否，隨著鹽度的增加，萵苣光合活性菌降低，80mM時的顯著低于0和40mM，表明高濃度鹽迫降低萵苣光合效率；無論什么鹽濃度下，接種叢枝菌的萵苣光合活性菌顯著高于未接種的，表明叢枝菌對萵苣的光合效率有顯著促進作用，增加了萵苣的耐鹽性。 

近期發(fā)表文獻：

AJIGBOYE O. O., LU CH., MURCHIE E. H., ET AL. (2017). Altered gene expression by sedaxane increases PSII efficiency, photosynthesis and growth and improves tolerance to drought in wheat seedlings. Pesticide Biochemistry and Physiology. Volume 137. Pages 49-61. DOI: 10.1016/j.pestbp.2016.09.008

CHEKANOV К., SCHASTNAYA E., SOLOVCHENKO A., ET AL. (2017). Effects of CO2 enrichment on primary photochemistry, growth and astaxanthin accumulation in the chlorophyte Haematococcus pluvialis. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. Volume 171. DOI 10.1016/j.jphotobiol.2017.04.028

DUARTE B., PEDRO S., MARQUES J. C., ET AL. (2017). Zostera noltii development probing using chlorophyll a transient analysis (JIP-test) under field conditions: Integrating physiological insights into a photochemical stress index. Ecological Indicators. Volume 76. DOI: 10.1016/j.ecolind.2017.01.023

HERNáNDEZ-CLEMENTE R., NORTH P.R.J., HORNERO A., ET AL. (2017). Assessing the effects of forest health on sun-induced chlorophyll fluorescence using the FluorFLIGHT 3-D radiative transfer model to account for forest structure, Remote Sensing of Environment,. Volume 193. Pages 165-179. DOI: 10.1016/j.rse.2017.02.012

LEE M. W., HUFFAKER A., CRIPPEN D., ET AL. (2017). Plant Elicitor Peptides Promote Plant Defenses against Nematodes in Soybean. Molecular Plant Pathology. DOI: 10.1111/mpp.12570MARTEL A. B. AND QADERI M. M. (2017). Light quality and quantity regulate aerobic methane emissions from plants. Physiol Plantarum. Volume 159. DOI:10.1111/ppl.12514